Surveillance de l'infestation par *Varroa*

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Sa présence peut compromettre le développement des abeilles, favoriser la transmission de virus et contribuer à l'affaiblissement ou à la perte de colonies.

Dans de nombreuses régions du Portugal, Varroa est largement disséminé, ce qui rend sa surveillance une composante essentielle de la gestion sanitaire.

Cependant, la présence du parasite ne permet pas, à elle seule, de déterminer la gravité de l'infestation.

Le plus important est de connaître le niveau d'infestation, de suivre son évolution et d'interpréter les résultats dans le contexte de chaque colonie.

1. Qu'est-ce que Varroa destructor ?

Varroa destructor est un acarien ectoparasite qui se nourrit des tissus des abeilles, notamment de la graisse corporelle, et se reproduit à l'intérieur des cellules de couvain operculé.

Son cycle de vie est intimement lié au développement des abeilles.

Les femelles adultes peuvent se trouver sur les abeilles adultes, dans une phase généralement appelée phase phorétique, ou à l'intérieur des cellules de couvain, où a lieu la reproduction.

Avant l'operculation, une femelle reproductrice entre dans une cellule contenant une larve proche de la phase d'operculation.

Après l'operculation de la cellule, l'acarien commence la reproduction, produisant une descendance qui se développe pendant la phase de nymphe de l'abeille.

Lorsque l'abeille émerge, la femelle fondatrice et ses descendantes adultes viables peuvent sortir de la cellule.

La reproduction est généralement plus favorable dans les cellules de faux-bourdons, en raison de la période d'operculation plus prolongée.

Cette relation entre Varroa et le couvain explique pourquoi la dynamique de l'infestation varie au cours de l'année.

2. Pourquoi est-il important de surveiller ?

L'infestation par Varroa peut augmenter de manière significative pendant les périodes de couvain intense.

Une colonie apparemment forte peut présenter des niveaux élevés d'infestation sans signes externes évidents.

Lorsque des abeilles aux ailes déformées apparaissent, des altérations du couvain ou une diminution marquée de la population, les dommages peuvent déjà être considérables.

La surveillance permet :

• D'identifier les augmentations de l'infestation avant l'apparition de symptômes évidents.
• De comparer l'évolution de la même colonie au fil du temps.
• D'identifier les différences entre les colonies du même rucher.
• D'appuyer les décisions d'intervention sanitaire.
• D'évaluer les résultats des mesures de contrôle.
• De détecter d'éventuelles situations de réinfestation.
• De construire un historique sanitaire de l'exploitation.

L'observation visuelle des abeilles ne remplace pas une évaluation structurée.

L'absence d'acariens visibles ne signifie pas absence d'infestation.

3. Quand réaliser la surveillance ?

La fréquence de surveillance doit prendre en compte la période de l'année, le développement du couvain, l'historique de la colonie et les conditions sanitaires du rucher.

Au Portugal, l'évolution de l'infestation peut varier de manière significative entre les régions, en raison des différences de climat, de flore et de dynamique des colonies.

Printemps

L'augmentation de la population et du couvain offre des conditions favorables à la reproduction de Varroa.

À ce stade, la surveillance permet d'établir une référence initiale et d'identifier les colonies présentant des niveaux d'infestation supérieurs à ceux attendus.

Été

Pendant les périodes prolongées de couvain, la population d'acariens peut augmenter.

La surveillance est particulièrement importante à l'approche de la phase de production des abeilles qui soutiendront la colonie pendant l'hiver.

Automne

La réduction du couvain et de la population adulte peut provoquer une augmentation de la proportion d'acariens présents sur les abeilles adultes.

Une infestation élevée à ce stade peut compromettre la survie de la colonie pendant l'hiver, même lorsque les réserves alimentaires sont suffisantes.

Hiver

L'activité de couvain peut diminuer ou s'interrompre, selon la région et les conditions météorologiques.

L'interprétation des résultats doit prendre en compte la présence ou l'absence de couvain et la méthode de surveillance utilisée.

La nécessité d'éviter les perturbations pendant les périodes froides doit également influencer le choix de la procédure.

Fréquence d'évaluation

En pratique, on peut envisager une surveillance régulière pendant les périodes d'activité, souvent à intervalles mensuels, ajustés en fonction du risque et de l'historique sanitaire.

Les colonies présentant des résultats élevés, des situations de suspicion de réinfestation ou des périodes critiques peuvent justifier des évaluations plus fréquentes.

La surveillance après une intervention sanitaire est importante pour vérifier l'évolution de l'infestation.

Il n'existe cependant pas de calendrier universel adapté à toutes les exploitations.

4. Principales méthodes de surveillance

Il existe différentes méthodes pour estimer l'infestation par Varroa.

Chacune présente des avantages, des limitations et des modalités spécifiques d'interprétation.

Les résultats obtenus par des méthodes différentes ne doivent pas être considérés comme directement équivalents.

4.1. Lavage à l'alcool

Le lavage à l'alcool est une méthode d'échantillonnage des abeilles adultes utilisée pour estimer la proportion d'acariens présents dans cette population.

Elle consiste, de manière générale, à prélever un échantillon connu d'abeilles adultes, généralement sur des cadres de couvain, et à utiliser de l'alcool pour séparer les acariens des abeilles.

La procédure entraîne la mort des abeilles prélevées.

Il est essentiel de confirmer que la reine ne se trouve pas dans l'échantillon.

Un échantillon fréquemment utilisé contient environ 300 abeilles, bien que le nombre doive être connu ou estimé de manière cohérente.

Après avoir séparé et compté les acariens, on calcule l'infestation pour 100 abeilles.

Formule :

Infestation (%) = (Nombre d'acariens / Nombre d'abeilles échantillonnées) × 100

Exemple :

Dans un échantillon de 300 abeilles, on trouve 9 acariens.

Infestation = (9 / 300) × 100 = 3 %

Ce résultat correspond à une estimation de trois acariens pour chaque 100 abeilles adultes échantillonnées.

Cela ne signifie pas que 3 % de tous les individus de la colonie sont nécessairement infestés, ni ne représente directement la population totale d'acariens.

Avantages :

• Permet d'obtenir un indicateur quantitatif.
• Facilite la comparaison des résultats au fil du temps.
• Est fréquemment utilisé comme méthode de référence dans les protocoles de surveillance.

Limitations :

• Implique la mort des abeilles échantillonnées.
• Nécessite de prendre soin d'éviter le prélèvement de la reine.
• Le résultat dépend de la représentativité de l'échantillon et de l'exécution de la procédure.
• Ne comptabilise pas directement les acariens présents dans le couvain operculé.

4.2. Lavage avec une solution détergente

Certains protocoles utilisent de l'eau avec du détergent en remplacement de l'alcool.

L'objectif est de séparer les acariens des abeilles prélevées, permettant ainsi leur comptage.

Comme pour le lavage à l'alcool, l'échantillon d'abeilles est sacrifié.

L'efficacité dépend du protocole, de l'équipement et de l'exécution.

Pour comparer les résultats au fil du temps, il est important d'utiliser des procédures cohérentes.

4.3. Méthode du sucre glace

La méthode du sucre glace vise à déloger les acariens présents sur les abeilles adultes par l'application de sucre glace et l'agitation contrôlée de l'échantillon.

Les acariens libérés sont recueillis et comptés.

Cette méthode peut permettre de rendre les abeilles à la colonie, bien qu'elle ne soit pas exempte de stress, de lésions ou de mortalité.

L'efficacité de récupération des acariens peut varier avec l'humidité, la technique utilisée et d'autres facteurs.

Par conséquent, les résultats ne doivent pas être considérés comme directement équivalents à ceux obtenus par lavage à l'alcool.

Avantages :

• Peut éviter le sacrifice systématique des abeilles échantillonnées.
• Permet d'obtenir une estimation quantitative.

Limitations :

• La récupération des acariens peut être variable.
• Nécessite une exécution soigneuse.
• L'humidité et la cohérence de la procédure peuvent affecter le résultat.

4.4. Chute naturelle des acariens

Cette méthode utilise un plateau placé sous un fond sanitaire, permettant de recueillir et de compter les acariens qui tombent naturellement de la colonie.

Le plateau reste installé pendant une période connue.

Le résultat est généralement exprimé en acariens par jour.

Formule :

Chute moyenne quotidienne = Nombre d'acariens recueillis / Nombre de jours d'observation

Exemple :

Pendant quatre jours, 24 acariens sont recueillis.

Chute moyenne quotidienne = 24 / 4 = 6 acariens/jour

Cet indicateur permet de suivre les tendances, mais ne correspond pas directement à un pourcentage d'infestation des abeilles adultes.

Avantages :

• Ne nécessite pas de prélèvement d'abeilles.
• Permet de suivre l'évolution avec une perturbation relativement réduite.
• Peut être utile pour observer les changements après certaines interventions.

Limitations :

• La chute varie avec la quantité de couvain, l'activité de la colonie et d'autres facteurs.
• La durée de la collecte influence la stabilité de l'estimation.
• Les fourmis et d'autres organismes peuvent retirer des acariens du plateau.
• Ne permet pas de convertir directement le résultat en un pourcentage d'infestation des abeilles adultes sans hypothèses supplémentaires.

Il est important de distinguer la chute naturelle de la chute observée après l'application d'un traitement acaricide.

4.5. Évaluation du couvain de faux-bourdons

L'inspection des cellules de faux-bourdons operculées peut permettre d'observer les acariens reproducteurs et leur descendance.

Cette méthode fournit des informations sur la présence et la reproduction du parasite dans le couvain.

Cependant, le résultat dépend de la disponibilité de couvain de faux-bourdons et ne doit pas être interprété comme équivalent à l'infestation des abeilles adultes.

Elle peut être utilisée comme information complémentaire, mais ne remplace pas nécessairement d'autres méthodes quantitatives.

5. Comment interpréter les résultats ?

L'une des erreurs les plus fréquentes consiste à interpréter toute valeur d'infestation de manière isolée.

Par exemple, un résultat de 3 % n'a pas nécessairement la même signification à toutes les périodes de l'année ou dans toutes les colonies.

L'évaluation doit prendre en compte :

Période de l'année : le risque associé à l'infestation varie avec le cycle annuel de la colonie.

Quantité de couvain : une partie significative des acariens peut se trouver dans le couvain operculé.

Population adulte : la même quantité d'acariens peut représenter des pressions différentes dans des colonies avec des populations distinctes.

État sanitaire : la présence de virus et d'autres problèmes sanitaires peut aggraver les effets de l'infestation.

Historique : une valeur en augmentation peut mériter une attention même lorsqu'elle ne semble pas encore élevée.

Interventions antérieures : il est important de connaître les traitements réalisés, leurs dates respectives et les résultats observés.

Existe-t-il des valeurs de référence ?

Diverses entités et programmes techniques utilisent des valeurs de référence pour appuyer les décisions de contrôle, souvent exprimées en acariens pour 100 abeilles adultes.

Cependant, ces seuils varient selon la région, la période de l'année, la méthode de surveillance et les objectifs sanitaires.

Une valeur de 2 % ou 3 %, par exemple, peut être utilisée comme référence dans certains protocoles, mais ne doit pas être interprétée comme une limite universelle de sécurité ou comme une indication automatique de traitement.

La décision doit prendre en compte les orientations techniques et sanitaires applicables, le contexte de l'exploitation et l'évolution des résultats.

6. L'importance de l'évolution de l'infestation

La surveillance prend de la valeur lorsque les résultats sont comparés au fil du temps.

Considérons l'exemple hypothétique suivant :

Les valeurs montrent une tendance à la hausse.

Même sans établir un seuil d'intervention, l'évolution indique que la pression parasitaire est en augmentation.

Une évaluation ultérieure pourra confirmer si cette tendance se poursuit, se stabilise ou diminue.

D'autre part, un résultat isolé de 3 % ne permet pas de déterminer la vitesse de croissance de l'infestation.

C'est pourquoi les enregistrements historiques sont importants.

Pour que la comparaison soit valable, il convient de maintenir, autant que possible, la même méthode, la taille de l'échantillon et les conditions de prélèvement.

7. Surveillance avant et après les traitements

La surveillance peut appuyer l'évaluation des interventions sanitaires.

Avant le traitement

Permet de connaître le niveau d'infestation initial et de contextualiser la décision d'intervention.

Après le traitement

Permet de vérifier si l'infestation a diminué et si elle reste à un niveau compatible avec les objectifs sanitaires définis.

Il est important de respecter l'intervalle approprié pour l'évaluation, en tenant compte du produit utilisé, de la durée du traitement et du cycle de couvain.

La chute de nombreux acariens pendant un traitement montre que des acariens ont été affectés, mais ne prouve pas, à elle seule, que l'infestation résiduelle est faible.

Évaluation de la réduction de l'infestation

Lorsque l'on utilise des mesures comparables avant et après une intervention, on peut calculer la réduction en pourcentage observée.

Formule :

Réduction observée (%) = ((Infestation initiale − Infestation finale) / Infestation initiale) × 100

Exemple :

• Infestation initiale : 4,0 %
• Infestation finale : 1,0 %

Réduction observée = ((4 − 1) / 4) × 100 = 75 %

Cette valeur représente la réduction observée entre deux mesures.

Elle ne doit pas être confondue avec l'efficacité pharmacologique du produit, car des facteurs tels que la reproduction des acariens, la réinfestation, la quantité de couvain et la variabilité de l'échantillonnage peuvent influencer le résultat.

Les traitements doivent respecter les médicaments autorisés, les conditions d'utilisation et les orientations de la DGAV.

Ainsi, une colonie ayant présenté une réduction significative après un traitement peut à nouveau enregistrer des niveaux élevés d'infestation.

L'évaluation de plusieurs colonies du même rucher permet d'identifier les différences et de suivre la situation sanitaire de manière plus globale.

Surveiller une seule colonie ne garantit pas que le résultat représente toutes les autres.

9. Varroa et transmission de virus

Varroa joue un rôle important dans la transmission et l'amplification de virus associés aux abeilles.

Parmi les plus connus figure le virus des ailes déformées (Deformed Wing Virus — DWV).

L'infestation peut contribuer à l'apparition d'abeilles présentant des altérations des ailes, une réduction de la longévité et d'autres problèmes de développement.

Cependant, toutes les abeilles infectées ne présentent pas de signes visibles.

Une colonie peut subir des effets associés à Varroa et aux virus sans qu'il y ait d'abeilles aux ailes déformées à l'entrée.

La surveillance quantitative est donc importante même lorsque la colonie semble en bonne santé.

10. Que noter lors de chaque surveillance ?

Pour suivre l'infestation de manière cohérente, il est utile de conserver des informations sur la méthode utilisée et les conditions de l'observation.

Le reste de la table est identique à la traduction précédente.

L'objectif est de fournir une information organisée pour soutenir les décisions de l'apiculteur, en respectant les différentes méthodes de surveillance et de gestion.

12. Erreurs fréquentes dans la surveillance

Certaines erreurs peuvent compromettre l'interprétation des résultats.

Se fier uniquement à l'observation visuelle : l'absence d'acariens visibles ne signifie pas une infestation faible.

Comparer des méthodes différentes : les résultats de lavage, de sucre glace et de chute naturelle ne sont pas directement équivalents.

Ignorer la taille de l'échantillon : sans cette information, il n'est pas possible de calculer correctement le pourcentage d'infestation.

Évaluer une seule fois par an : une mesure isolée ne permet pas de suivre l'évolution.

Négliger le couvain operculé : une partie des acariens peut se trouver à l'intérieur des cellules.

Confondre la chute après traitement avec l'infestation résiduelle : le comptage des acariens tombés ne montre pas combien restent dans la colonie.

Ne pas enregistrer les résultats : sans historique, il est difficile d'identifier les tendances et d'évaluer les interventions.

Utiliser des seuils sans contexte : les valeurs de référence doivent être interprétées en fonction de la méthode, de la période et des orientations applicables.

13. Conclusion

La surveillance de Varroa est un outil fondamental pour comprendre la situation sanitaire des colonies.

Plus que de rechercher une valeur isolée, il importe de suivre l'évolution de l'infestation, d'utiliser des méthodes cohérentes et de relier les résultats au développement des abeilles.

Les différentes méthodes de surveillance présentent des avantages et des limitations, de sorte que leur choix doit prendre en compte les objectifs de l'évaluation et les conditions du rucher.

L'enregistrement systématique permet de comparer les résultats, d'identifier les tendances et d'évaluer les interventions au fil du temps.

On ne peut pas gérer correctement ce que l'on ne mesure pas. Surveiller *Varroa*, c'est transformer une menace peu visible en information utile pour protéger les colonies.

Références et sources de consultation

• Rosenkranz, P., Aumeier, P. & Ziegelmann, B. (2010). Biology and control of Varroa destructor. Journal of Invertebrate Pathology, 103, S96–S119.
• Dietemann, V. et al. (2013). Standard methods for varroa research. Journal of Apicultural Research, 52(1).
• Ramsey, S. D. et al. (2019). Varroa destructor feeds primarily on honey bee fat body tissue and not hemolymph. Proceedings of the National Academy of Sciences, 116(5), 1792–1801.
• Traynor, K. S. et al. (2020). Varroa destructor: A complex parasite, crippling honey bees worldwide. Trends in Parasitology, 36(7), 592–606.
• COLOSS — BEEBOOK: Standard Methods for Apis mellifera Research.
• Direção-Geral de Alimentação e Veterinária (DGAV) — Informations sur la santé apicole et les médicaments vétérinaires : https://www.dgav.pt
• World Organisation for Animal Health (WOAH) — Informations techniques sur la varroose des abeilles : https://www.woah.org

Note : Cet article a un caractère informatif. La surveillance et le contrôle de Varroa doivent respecter les orientations sanitaires applicables, les conditions locales et l'utilisation de médicaments vétérinaires autorisés.

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